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Panexin basic


Panexin basic ist ein chemisch definierter Serumersatz zur Kultivierung von adhärenten und nicht adhärenten Zellen unter serumfreien Bedingungen. Panexin kann Serum in der Zellkultur vollständig ersetzen oder signifikant reduzieren. Es unterstützt optimal das Wachstum einer Vielzahl von Zelltypen ohne zusätzlichen Handhabungsaufwand im Vergleich zu Serum.

Mehr Informationen können Sie unserem Flyer entnehmen. 

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BeschreibungEinheitProduktnummerDatenblatt
Panexin basic 50 ml
100 ml
500 ml
P04-96090
P04-96900
P04-96950
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Panexin basic enthält gereinigte Proteine, Lipide, Salze, Aminosäuren, Spurenelemente, Hormone und ein 3-dimensionales Wirkstoff-Freisetzungssystem (3D-SRS) in einer optimierten Rezeptur. Es enthält keine Wachstumsfaktoren, undefinierte Hydrolysate oder Peptone.
Panexin basic ist geeignet für die Kultivierung einer Vielzahl von adhärenten und nicht adhärenten Zellen unter serumfreien Bedingungen. Weitere Informationen finden Sie im Datenblatt.
Panexin basic wurde entwickelt, um Serum in der Zellkultur auf sehr einfache Weise zu ersetzen oder zu reduzieren. In den meisten Fällen ist es nicht nötig, das Basalmedium zu ändern. Da Panexin basic vollständig chemisch definiert ist und keine Peptone oder Hydrolysate enthält, ist eine Chargentestung nicht mehr erforderlich. Es ermöglicht auch eine hohe Reproduzierbarkeit und einen vereinfachten Downstream Prozess. Panexin basic enthält keine Wachstumsfaktoren und ermöglicht eine definierte Proliferation und Differenzierung von Stammzellen. Untersuchungen der Eigenschaften von Wachstumsfaktoren zeigen besser reproduzierbare und eindeutigere Ergebnisse. Panexin basic ist auch nützlich, um sensible zellbasierte in vitro Tests und Kokulturverfahren zu entwickeln.
Panexin-Produkte sind chemisch definierte Serum-Ersatzprodukte, die erfolgreich für eine breite Palette von Zellkulturen angewendet wurden.

Human pancreatic adenocarcinoma cells

• Gamper et al., Cell Biology International Volume 40, Issue 10, Pages 1050–106, 2016.
http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/cbin.10645/full
• Freud et al., Preprints 2016, 2016100056
www.preprints.org/manuscript/201610.0056/v1/download
• Schlingensiepen et al., Cancer Science Volume 102, Issue 6 June 2011 Pages 1193–1200
http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1349-7006.2011.01917.x/full
• HouHou et al., Patent US20110171213 A1

Human prostate cancer cells

• Lisa Rauschenberger, Dissertation „Strukturelle und funktionelle Charakterisierung von Exosomen aus Prostatakarzinomzellen“, 2016.
http://d-nb.info/111106475X/34
• Rauschenberger et al., Prostate. 2016 Mar;76(4):409-24
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26643154
• Stope et al., Anticancer Res. 2013 Nov;33(11):4921-6
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24222130

Human liposarcoma

• Harati et al., Int J Mol Med. 2016 Jun; 37(6): 1535–1541.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4867885/pdf/ijmm-37-06-1535.pdf

Tumor (adenocarcinoma) primary fibroblasts

• Castoldi, Dissertation “Generation and characterization of multi-specific antibodies for therapeutic applications in oncology”, 2014.
https://edoc.ub.uni-muenchen.de/16625/1/Castoldi_Raffaella.pdf

Human hepatoblastoma cells

• S Beckers, Dissertation “High throughput toxicity, physiological and metabolic studies for the characterization of hepatocytes and human embryonic stem cell derived hepatocyte-like cells.”, 2011
http://scidok.sulb.uni-saarland.de/volltexte/2011/3665/pdf/Dissertation_Simone_Beckers_23.03_neu.pdf

Human breast cancer cell

• Peter et al., Journal of Biomolecular Techniques 18:287–297 © 2007 ABRF
https://www.researchgate.net/profile/Jochen_Peter/publication/5682413_Enrichment_and_detection_of_molecules_secreted_by_tumor_cells_using_magnetic_reversed-phase_particles_and_LC-MALDI-TOF-MS/links/5460abd40cf2c1a63bfeb17e.pdf

Rheumatoid arthritis synovial fibroblasts

• Zimmermann-Geller et al., The Journal of Immunology October 1, 2016 vol. 197 no. 7 2589-2597.
http://www.jimmunol.org/content/197/7/2589.short

Coculture: Human liposarcoma cells and tumor-associated fibroblasts

• Harati et al., Int J Mol Med. 2016 Jun; 37(6): 1535–1541.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4867885/pdf/ijmm-37-06-1535.pdf.

Coculture: MRC5 and tumor-associated fibroblasts

• Majety et al., PLOS ONE | DOI:10.1371/journal.pone.0127948 June 8, 2015
http://journals.plos.org/plosone/article/file?id=10.1371/journal.pone.0127948&type=printable.

Coculture: SZ95 sebocytes and normal human fibroblasts

• Nikolakis et al., https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25828468
http://journals.plos.org/plosone/article/file?id=10.1371/journal.pone.0127948&type=printable.

Coculture: H596 and normal and tumor (adenocarcinoma) primary fibroblasts

• Castoldi, Dissertation “Generation and characterization of multi-specific antibodies for therapeutic applications in oncology”, 2014
https://edoc.ub.uni-muenchen.de/16625/1/Castoldi_Raffaella.pdf

Human corneal epithelial cells

• Hahne et al., Int J Pharm. 2011 Sep 15;416(1):268-79
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21771646

Human myometrial microvascular endothelial cells

• Dietrich et al., Fertil Steril. 2011 Mar 15;95(4):1247-55.e1-2
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21130428

rMSC

• Puts et al., Ultrasound in Medicine & Biology, Volume 42, Issue 12, December 2016, Pages 2965–2974.
http://ieeexplore.ieee.org/document/7317777/
• Puts et al., Ultrasonics Symposium (IUS), 2014 IEEE International,3-6 Sept. 2014
http://ieeexplore.ieee.org/document/6932303/

hMSC

• Ichikawa et al., Cell Biol Int. 2010 Apr 27;34(6):615-20
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20218971

Hematopoietic cells

• Ridder et al., PLoS Biol. 2014 Jun; 12(6): e1001874.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4043485/

Bone marrow derived macrophages

• Stolt et al., J Immunol. 2016 Aug 1;197(3):834-46.
http://www.jimmunol.org/content/197/3/834.short
• Hommes et al., Am J Respir Cell Mol Biol. 2015 Nov;53(5):647-55
http://www.atsjournals.org/doi/pdf/10.1165/rcmb.2014-0485OC
• Hof et al., Infect Immun. 2014 May; 82(5): 2006–2015
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3993457/
• Depke et al., Journal of Proteomics Volume 103, 30 May 2014, Pages 72–86
http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1874391914001493
• Schramm et al., Eur. J. Immunol. 2014. 44: 728–741.
http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/eji.201343940/full
• Bast et al., LoS Pathog 10(3): e1003986. doi:10.1371/journal.ppat.1003986.
http://journals.plos.org/plospathogens/article?id=10.1371/journal.ppat.1003986
• Koh et al., PLoS Negl Trop Dis. 2013 Oct; 7(10): e2500
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3798430/
• Farinacci et al., Vaccine. 2012 Dec 14;30(52):7608-14
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23088886
• Erttmann et al., Free Radic Biol Med. 2011 Aug 1;51(3):626-40
http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0891584911003248
• Norville et al., Microbiology. 2011 Sep;157(Pt 9):2629-38
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21680634
• Breitbach et al., BMC Immunol. 2011; 12: 20
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3072354/
• Bast et al., Toxicol In Vitro. 2010 Mar;24(2):686-94.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20869433
• Eske et al., J Immunol Methods. 2009 Mar 15;342(1-2):13-9.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19133267
• Breitbach et al., Infect Immun. 2009 Apr; 77(4): 1589–1595
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2663179/
• Traeger et al., Infect Immun. 2008 Nov; 76(11): 5285–5293
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2573314/

HEK

• Lisa Rauschenberger, Dissertation „Strukturelle und funktionelle Charakterisierung von Exosomen aus Prostatakarzinomzellen“, 2016.
http://d-nb.info/111106475X/34
• Into et al., Mol Cell Biol. 2008 Feb; 28(4): 1338–1347.
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2258749/

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